在使用显微镜的时候，我们通常需要将样品切片，使样品非常薄，可以使之在显微镜的透射光源下透光率非常的好，那么石蜡切片就需要很好的技术和能力了，那么下面我们讲讲石蜡切片的准备工作及器材

3．固定液的性质和条件
（1）能迅速渗入组织，使组织细胞形态在短期内不至于有较大变化。
（2）固定液有相当的渗透力，对组织各部分的渗透力相等，可使组织内外完全固定。
（3）使组织细胞不至于因固定而引起人为的改变。
（4）尽可能避免固定剂使组织膨胀或收缩。
（5）使组织达到一定硬度，获得较佳的折光率和对染料具有较强的亲合力。
4．固定时应注意的事项
（1）固定液及被固定的组织必须新鲜；
（2）固定液的用量一般为组织体积的10~20倍，容器不要过小，材料也不要太多；应避免组织紧贴瓶底或瓶壁，以免影响固定液的渗入，必要的时候可以在瓶底垫上一层棉花；
（3）固定时间视组织块的种类、性质、大小，固定液的种类、性质、渗透力的强弱，固定时的温度的高低，实验目的等；
（4）防止被固定的组织因固定剂的作用而发生变形；
（5）固定所用的固定液，以新配的为好，放置过久会失效；
（6）在固定期间摇动组织或摇动容器有利于固定液的渗入，对长期固定的标本，可经常更换固定液
（7）取材固定应同时作好记录，包括组织名称、固定液和时间等内容。
5．固定剂
单纯固定剂
（1）10%甲醛：对组织渗透性强，固定均匀。对组织膨胀约5%，经酒精脱水时有较大的收缩。能保存脂肪，不能沉淀核蛋白及白蛋白，长期用其固定的组织使组织变为酸性，不利于染色，特别是细胞核的着色。经自来水冲洗6~24小时后，可以使其酸碱中和，并减少结晶。
（2）4%多聚甲醛：对组织穿透性好，组织收缩小，对大多数抗原物质保存较好，特别是对脂肪和各种酶的固定效果更好。固定的时间不宜太长，以24小时以内为宜，适用于免疫组织化学染色。
（3）饱和的苦味酸溶液：能沉淀一切蛋白质，渗透力弱，对组织收缩大，故一般不能单独使用。
（4）冰醋酸：渗透力强，沉淀核蛋白，对染色质固定好，使组织膨胀，故一般不单独使用。
（5）锇酸：价格昂贵，为强氧化剂，易还原成氢氧化锇，呈黑色沉淀；必须避光保存。不能沉淀蛋白质，而使蛋白质凝胶化，所以对蛋白质固定不均匀，锇酸固定的细胞能保持生活时的形态，不收缩细胞，对胞质固定较长好，核的固定不好，锇酸为脂肪及类脂质的优良固定剂，经它固定的脂肪和类脂质呈黑色，特别是对于是显示线粒体和高难度尔基复合体效果良好。
混合固定剂
（1）Bouin氏固定液：为常用的良好的固定剂，穿透速度快，组织收缩性较小，固定均匀，固定后组织有适当的硬度，对于切片和染色均有良好的效果。一般固定12~24小时，固定后入70%酒精洗去苦味酸的黄色，在脱水时经各浓度酒精也可洗去黄色，在酒精中加入氨水一滴或少许碳酸钾饱和水溶液，可加快洗去苦味酸的黄色即使留有少量苦味酸的黄色，对一般染色体并无影响。
（2）Zenker液（PH2.3）：此液多用于一般组织的固定，它能使细胞核、细胞质染色清晰但固定时间长，一般要12~36小时，加热可以缩短固定时间。固定后的组织必须流水冲洗12小时，由于固定中含有升汞，在经70%酒精脱水时，加少量的碘液（0.5%碘酒精）以脱汞。
（3）Carnoy液：渗透力强，特别适宜于固定染色体、肝糖、粘液等一些较为细微的结构。显示DNA、RNA效果良好。
（4）改良Bouin氏固定液：此液对一般组织固定效果都很好，固定时间为4~18小时，固定后直接放70%乙醇脱水，固定时间较长对组织亦无损害。
（七） 组织块修整 
固定后的组织块可能会在外部形态上有些改变，或者由于组织在还未固定时就取材，组织器官较软，取材不容易切平。经固定后的组织有一定的硬度，此时就可以做一些修整，但改变不要太大，只是将组织材料切取平整，修掉一些不规则的部位。修整组织块时，手术切片一定要锋利。

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